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实验一 普通光学显微镜及其使用1

实验二 特殊显微镜及其使用11

Ⅰ．暗视场显微镜11

Ⅱ．相差显微镜15

Ⅲ．荧光显微镜21

实验三 显微摄影术26

实验四 电子显微镜的演示49

实验五 细胞凝集反应53

实验六 细胞膜的渗透性54

实验七 巨噬细胞吞噬现象的观察56

实验八 线粒体和液泡系的超活染色与观察58

实验九 叶绿体的分离与荧光观察61

实验十 线粒体的分离与观察63

Ⅰ．大鼠肝线粒体的分离64

Ⅱ．玉米线粒体的分离65

实验十一 动物细胞微丝束的光学显微镜观察66

实验十二 微管和中等纤维的免疫荧光观察69

Ⅰ．动物细胞微管的观察69

Ⅱ．动物细胞中等纤维的观察71

Ⅲ．植物细胞微管的观察73

实验十三 DNA的Feulgen染色法75

实验十四 酸性磷酸酶的显示方法77

实验十五 动物染色体标本的制备与观察79

Ⅰ．小白鼠骨髓细胞染色体的制备方法80

Ⅱ．黑斑蛙或蟾蜍骨髓细胞染色体标本的制备81

实验十六 植物染色体标本的制备与观察82

实验十七 染色体核仁组成区的银染色法83

实验十八 减数分裂压片标本制备与观察85

实验十九 联会复合体的染色与观察87

实验二十 动物细胞培养89

Ⅰ．原代细胞培养89

Ⅱ．传代细胞培养与观察92

实验二十一 植物组织培养97

实验二十二 植物原生质体的分离和培养101

实验二十三 细胞电融合方法105

实验二十四 显微放射自显影技术111

实验二十五 细胞电泳116

实验二十六 类坏死的处理及死、活细胞鉴别122

实验二十七 透射电镜样品的制备与观察124

Ⅰ．组织的固定和包埋124

Ⅱ．支持膜的制作126

Ⅲ．玻璃刀的制作127

Ⅴ．切片130

Ⅳ．包埋块的修正130

Ⅵ．切片的染色131

Ⅶ．透射电镜样品的观察132

实验二十八 扫描电镜样品的制备与观察133

实验二十九 电镜酶化学技术141

Ⅰ．三磷酸腺苷酶141

Ⅱ．酸性磷酸酶142

实验三十 细胞器的分离143

实验三十一 膜蛋白质的分离149

实验三十二 脂质体的制备156

实验三十三 荧光标记技术158

实验三十四 免疫胶体金技术161

实验三十五 MAT法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活的影响164

实验三十六 腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法166

实验三十七 改良的空斑形成细胞测定法168

实验三十八 T淋巴细胞玫瑰花结实验171

实验三十九 3H标记化合物研究细胞内DNA和RNA的合成173

实验四十 3H标记膜片法测定细胞S期的DNA复制185

实验四十一 用3H标记化合物研究细胞内DNA、RNA和蛋白质代谢的动态过程186

实验四十二 用32p-磷酸氢二钠研究细胞内ATP代谢的动态过程189

实验四十三 放射免疫测定法191

Ⅰ．微量全血培养195

实验四十四 人体染色体组型分析与分带技术195

Ⅱ．人淋巴细胞染色体标本的制作196

Ⅲ．人类体细胞染色体组型分析199

Ⅳ．人类染色体G带显示法201

实验四十五 人体姊妹染色单体区分染色法203

实验四十六 植物染色体组型分析与分带技术205

Ⅰ．植物染色体标本制备的去壁低渗法205

Ⅱ．植物染色体组型分析方法208

Ⅲ．植物染色体GiemsaC-带技术211

Ⅳ．植物染色体GiemsaN-带技术213

Ⅴ．植物染色体GiemsaG-带技术214

实验四十七 杂交瘤技术216

实验四十八 哺乳类细胞中早熟染色体凝集的诱导和观察223

实验四十九 哺乳动物早期胚胎细胞的活体观察及体外培养技术226

实验五十 植物细胞的悬浮培养235

实验五十一 植物原生质体融合与体细胞杂交237

Ⅰ．聚乙二醇法诱导原生质体融合237

Ⅱ．供体-受体原生质体融合与胞质杂种的形成239

实验五十二 质粒DNA的快速提取241

实验五十三 用根癌农杆菌介导植物细胞的遗传转化245

实验五十四 植物细胞免疫荧光原位杂交248