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第一章　绪论1

第一节　细胞生物学与细胞工程实验目的与要求1

第二节　细胞生物学实验操作中基本实验技术4

第三节　细胞工程实验中的基本实验技术16

第二章　光学显微镜技术24

实验一　普通光学显微镜的结构和使用24

实验二　特殊显微镜的原理和应用32

实验三　光学显微标本石蜡切片的技术45

第三章　电子显微镜技术52

实验四　透射电子显微镜53

实验五　透射电子显微镜样品制备56

实验六　扫描电子显微镜62

实验七　扫描电子显微镜样品制备65

第四章　光镜下细胞及细胞器的观察69

实验八　细胞形态结构观察与细胞大小显微测量69

实验九　线粒体和液泡的活体染色与观察74

实验十　质体的徒手切片观察、叶绿体的切片荧光观察77

实验十一　细胞器的光镜切片观察79

实验十二　动植物细胞微丝束的光学显微镜观察85

实验十三　细胞膜的渗透性87

实验十四　黑藻细胞内胞质环流及其对细胞松弛素B的反应90

第五章　细胞化学92

实验十五　核酸细胞化学92

实验十六　糖及多糖类的细胞化学98

实验十七　细胞中碱性蛋白质与总体蛋白质的定位101

实验十八　脂类的细胞化学103

实验十九　细胞中过氧化物酶类鉴定105

实验二十　酸性磷酸酶的细胞化学106

第六章　细胞器、生物大分子分离技术108

实验二十一　菠菜叶片叶绿体分离与荧光观察108

实验二十二　小麦黄化苗线粒体的分离与观察111

实验二十三　动物细胞中细胞核与线粒体的分级分离113

实验二十四　小麦叶片可溶性蛋白质的分离115

实验二十五　小麦叶片蛋白质SDS-PAGE凝胶电泳117

实验二十六　小麦基因组总DNA的提取121

第七章　细胞分裂124

实验二十七　蛙血涂片的无丝分裂观察124

实验二十八　细胞有丝分裂过程的观察125

实验二十九　细胞减数分裂压片标本制备与观察129

第八章　染色体标本制备技术137

实验三十　植物染色体标本制备技术137

实验三十一　简易骨髓法快速制备动物染色体标本143

第九章　原位杂交技术147

实验三十二　植物染色体荧光原位杂交技术151

第十章　细胞凋亡155

实验三十三　细胞凋亡形态学检测方法162

第十一章　动物细胞培养与观察165

实验三十四　细胞培养的准备工作166

实验三十五　动物细胞的原代培养178

实验三十六　培养细胞计数及活力测定183

实验三十七　动物细胞的传代培养187

实验三十八　鸡红细胞的低温冷冻保存与复苏190

实验三十九　植物组织培养195

第十二章　植物组织培养195

实验四十　植物细胞的悬浮培养200

实验四十一　植物原生质体的分离与培养204

第十三章　细胞融合技术208

第一节　细胞融合的概念与意义208

第二节　细胞融合技术的建立与发展209

实验四十二　鸡血细胞的体外融合210

实验四十三　聚乙二醇方法诱导植物原生质体融合214

实验四十四　细胞电融合方法216

实验四十五　淋巴细胞杂交瘤技术220

第十四章　转基因动物技术230

第一节　转基因动物的原理和方法231

第二节　基因显微注射法所需仪器试剂234

第三节　实验动物的规格和准备237

第四节　显微注射操作方法239

第五节　转基因动物的检测方法245

参考文献254