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第一章 绪论1

一、动物生理学实验教学内容和目的1

二、动物生理学的研究方法1

三、动物生理学实验教学的整合及对学生综合能力的培养2

第二章BL-420生物功能实验系统7

一、系统概述7

二、系统性能指标7

三、原理7

四、软件使用方法9

五、注意事项16

第三章 实验动物的基本知识17

第一节 常用实验动物的种类及应用17

一、蟾蜍和青蛙17

二、家兔17

三、小鼠20

四、大鼠22

五、猪23

六、狗24

七、猫26

八、鸡27

九、鸽28

十、山羊28

十一、绵羊28

十二、马29

十三、牛29

第二节 实验动物的营养需要及饲养管理29

一、动物所需营养素的种类及影响营养需要量的因素30

二、常用实验动物的饲养标准和营养需要特点30

三、实验动物饲料的分类及其营养价值的评定32

四、实验动物饲养的辅助设施和设备33

第三节 实验动物常用操作技术34

一、动物实验中常用的手术方法34

二、实验动物的急救36

三、实验动物的护理37

第四章 实验动物的选择方法38

第一节 选择实验动物的基本原则38

一、相似性原则38

二、特殊性原则39

三、可靠性原则39

四、标准化原则39

五、重复性原则40

六、可控性原则40

七、规格化原则40

八、经济性原则40

第二节 常见动物实验中实验动物的选择41

一、实验动物的来源及其遗传背景41

二、实验动物的种类41

三、实验动物的品系41

四、实验动物的性别42

五、实验动物的年龄42

六、实验动物的体重42

七、实验动物的生理及健康状况42

八、实验动物的等级43

第三节 实验设计与技术操作对结果的影响及控制43

第五章 动物生理学实验室的生物安全及对实验者的要求45

第一节 动物生理学实验室的生物安全45

一、病原体分级45

二、生物安全等级45

三、影响动物实验室的环境因素45

第二节 动物生理学实验中对实验者的要求47

一、实验动物的订购与运输47

二、实验人员的保护48

第六章 动物实验的基本技术方法49

第一节 动物实验前的准备49

一、样本与剂量49

二、预实验与筛选50

三、手术动物的准备50

第二节 动物实验设计与分组51

一、实验设计的基本原则51

二、常用的实验设计方法53

第三节 实验动物的抓取与固定54

一、小鼠的抓取与固定54

二、大鼠的抓取与固定55

三、豚鼠的抓取与固定55

四、兔的抓取与固定56

五、犬的抓取与固定56

六、猫的抓取与固定57

七、蛙类的抓取与固定57

第四节 常见实验动物性别鉴定与日龄判断58

一、实验动物性别鉴定58

二、实验动物日龄的判断58

第五节 动物标记法及去毛法59

一、动物标记法59

二、动物去毛法60

第六节 动物的麻醉方法61

一、全身麻醉61

二、局部麻醉63

三、椎管内麻醉65

四、动物麻醉深度的判定65

第七节 动物给药途径与方法65

一、注射给药66

二、经口给药67

三、吸入给药68

四、气管注入法68

第八节 动物血液采集方法69

一、实验动物血液的采集69

二、常用实验动物的采血部位及方法70

第九节 动物各种体液的采集方法73

一、尿液的采集73

二、胆汁的采集73

三、胰液的采集74

四、淋巴液的采集74

五、唾液的采集74

六、阴道液的采集74

七、精液的采集74

八、乳汁的采集75

九、实验动物粪便的采集75

第十节 受试动物的临床检查方法75

一、肝脏活检方法75

二、淋巴结活检方法75

三、骨组织活检方法75

四、阴道组织活检方法75

第十一节 动物的处死方法76

一、大鼠和小鼠76

二、犬、猫、兔、豚鼠76

第七章 动物实验外科操作技术与常见手术方法77

第一节 术前准备及术后处理77

一、术前准备77

二、术后处理81

第二节 动物实验外科基本操作技术82

一、组织分离82

二、组织切开83

三、止血83

四、打结84

五、缝合86

六、拆线87

第八章 细胞的基本功能88

实验一 坐骨神经-腓肠肌标本的制备及生物电现象的观察88

实验二 刺激与反应的关系90

实验三 蛙坐骨神经干动作电位的观察92

实验四 神经干兴奋不应期的测定94

实验五 强度-时间曲线的测定95

实验六 神经-肌肉接头兴奋的传递和阻滞96

实验七 蛙坐骨神经-腓肠肌标本中神经、肌肉兴奋时的电活动、肌肉收缩以及不同因素对观察指标的影响（综合性实验）98

实验八 骨骼肌终板电位的记录及药物的影响（综合性实验）99

实验九 影响神经动作电位传导速度的因素（设计性实验）100

第九章 血液生理101

实验一 血细胞比容的测定101

实验二 红细胞渗透脆性的测定102

实验三 红细胞沉降率的测定103

实验四 血细胞计数104

实验五 血红蛋白含量的测定107

实验六 出血时间和凝血时间的测定108

实验七 影响血液凝固的因素109

实验八ABO血型鉴定和交叉配血实验111

第十章 血液循环生理113

实验一 蛙心起搏点观察113

实验二 蛙类微循环的显微观察114

实验三 蛙心的期前收缩与代偿间歇116

实验四 蛙心脏灌流实验观察118

实验五 动脉血压的直接测定与影响因素120

实验六 人体动脉血压的间接测定及运动对血压的影响122

实验七 影响心排血量的因素及其实验观察（综合性实验）124

第十一章 呼吸生理127

实验一 家兔胸内压的测定和开放性气胸的观察127

实验二 家兔呼吸运动的调节128

实验三 隔肌电活动的记录130

实验四 呼吸运动、胸内压及隔神经放电的同步观察（综合性实验）132

第十二章 消化生理135

实验一 离体小肠平滑肌的生理特性135

实验二 唾液分泌的观察137

实验三 胰液和胆汁的分泌139

实验四 胃内容物的分层分布141

实验五 猪胃液的分泌142

实验六 胃肠道运动的直接观察143

实验七 反刍动物咀嚼与瘤胃运动的描记144

实验八 反刍活动观察145

实验九 瘤胃内容物的观察147

实验十 肠内容物渗透压对小肠物质吸收的影响147

第十三章 能量代谢和体温调节149

实验一 小白鼠能量代谢的测定149

实验二 动物体温的测定150

实验三 甲状腺激素对代谢的影响151

第十四章 泌尿生理153

实验一 影响尿生成的因素153

实验二 循环、呼吸、泌尿功能的综合观察155

第十五章 神经与感觉生理158

实验一 脊髓反射的基本特征和反射弧的分析158

实验二 大脑皮层运动功能定位和去大脑僵直160

实验三 损伤小鼠一侧小脑对躯体运动的影响163

实验四 破坏豚鼠一侧迷路的效应164

实验五 小白鼠电防御条件反射的建立、分化与消退164

实验六 家兔大脑皮层诱发电位166

实验七 豚鼠耳蜗微音器电位的观察167

实验八 毁蛙脑不同部位引起骨骼肌运动的观察169

实验九 交互抑制170

实验十 自主神经末梢递质释放的观察171

第十六章 内分泌和生殖生理173

实验一 摘除肾上腺对动物耐受力的影响173

实验二 摘除甲状旁腺对动物机体的影响174

实验三 胰岛素和肾上腺素对血糖水平的影响176

实验四 摘除垂体对体内某些内分泌腺的影响177

实验五 垂体激素对蛙卵巢的作用178

实验六 甲状腺激素对蝌蚪发育的影响179

实验七 甲状腺激素的放射免疫测定180

实验八 小鼠发情周期的检查182

实验九 雌激素对雌性小鼠生殖器官发育的影响183

实验十雄激素对鸡冠发育的影响183

实验十一 精子耗氧强度的测定184

实验十二 精子活力的检查和畸形率测定185

实验十三 蛙的受精方法及卵裂的观察187

实验十四 大鼠离体子宫平滑肌运动的观察188

实验十五 甲状腺对大鼠能量代谢率的影响及其分泌调节（综合性实验）190

一、摘除甲状腺对大鼠能量代谢率的影响190

二、垂体提取物对离体培养的甲状腺组织分泌甲状腺激素的影响190

第十 七章 设计性实验192

第一节 设计性实验的基本原则192

一、科学性原则192

二、简便性原则192

三、可行性原则192

四、单一变量原则192

五、可重复性原则192

六、对照性原则193

第二节 实验设计的基本过程193

一、设计性实验的基本思路193

二、设计性实验的基本环节193

三、设计性实验的基本程序194

四、设计性实验的具体步骤194

第三节 设计性实验举例195

实验一 低温应激对小鼠不同组织脂质过氧化状态的影响195

实验二 人参对游泳应激小鼠血清葡萄糖、尿素和肌酐含量的影响196

实验三 川芎水煎液对离体蟾蜍心电图的影响197

附录198

附录一 常用生理溶液的配制198

附录二 实验动物的一般常数199

附录三 常用注射麻醉剂、消毒药品和洗涤液的参考剂量、配置及用途200

附录四 常用血液抗凝剂的配制及其方法201

附录五 动物给药量的确定及人与动物的用药量换算方法202

参考文献204